Laboratoryjny fermentator - bioreaktor

Laboratoryjny fermentator - bioreaktor

Innowacja prowadzi do fermentatora wysokiej jakości przy niskich kosztach. LAMBDA MINIFOR wprowadza nowe koncepcje w laboratoryjnej fermentacji i kulturach komórkowych:

LAMBDA MINIFOR autoklawialny stołowy bioreaktor / fermentator


Stołowy fermentator-bioreaktor laboratoryjny LAMBDA MINIFOR

Stołowy fermentator-bioreaktor LAMBDA MINIFOR został opracowany w odpowiedzi na potrzebę skonstruowania małego laboratoryjnego fermentatora o objętości od 35 ml do ponad 6 litrów. Bazując na wieloletnim osobistym doświadczeniu w fermentacji chcieliśmy stworzyć fermentator, który byłby łatwy w obsłudze oraz posiadał zdolność pomiaru i kontroli wszystkich ważnych biologicznych parametrów kultury.

Fermentator powinien zajmować minimum przestrzeni, ale z dobrym dostępem do wszystkich części.Kilka fermentatorów powinno dać się ustawić obok siebie w celu optymalizacji parametrów wzrostu lub optymalizacji biotransformacji.

Każdy fermentator powinien być w stanie pracować niezależnie lub móc być podłączony do komputera w celu zaawansowanych regulacji i intensywnej obróbki danych.

Aby utrzymać niski koszt fermentora-bioreaktora MINIFOR nie tracąc na jego jakości zostało wprowadzone kilka nowych pomysłów i innowacji:

Zamiast kosztownej kolby fermentatora z pokrywą ze stali nierdzewnej zostały zastosowane naczynia w całości szklane z gwintowanymi złączkami. Stosowane są one przez wiele lat w hodowlach komórkowych i okazało się, że utrzymują idealną sterylność. Dzięki tej koncepcji fermentator-bioreaktor MINIFOR można złożyć w krótkim czasie.

Zamiast tradycyjnego mieszadła śrubowego, który wymaga kosztownego silnika i sprzęgła magnetycznego, wprowadziliśmy mieszanie „up-and-down”. Silnik wraz z niedrogimi membranami zapewnia doskonałą sterylność i skuteczne mieszanie bez formowania wiru (nie są potrzebne przegrody). Jednocześnie ten rodzaj mieszania jest łagodniejszy dla komórek i produkuje mniej piany. Nowe „biomickingowe” mieszadła w kształcie „rybiego ogona” zapewniają maksymalną wydajność bez obecności krawędzi tnących.

Kultury są podgrzewane przez promieniowanie cieplne emitowane przez radiator ze złotym reflektorem umieszczonym pod naczyniem fermentacyjnym. Ciepło jest pochłaniane łagodnie przez kulturę podobnie jak słońce ogrzewa wodę. Nie występuje przegrzewanie kultury w jakiejkolwiek objętości i zlikwidowane są kosztowne naczynia z podwójną ścianką do kąpieli w łaźnie wodnej. Jednocześnie nie są obecne rurki i przewody co czyni fermentator mniej skomplikowanym.

W miarę możliwości drogie elementy wyposażenia zostały zastąpione nowymi wysokiej jakości elementami plastikowymi.

Przy użyciu nowoczesnych mikroprocesorów możliwe było umieszczenie wszystkich elementów elektronicznych w przedniej części urządzenia. Sprawia to, że fermentor jest niezwykle kompaktowy i eliminuje wysoką osłonę obudowy. Pomimo niewielkich rozmiarów mierzonych i kontrolowanych jest sześć parametrów w podstawowej konfiguracji MINIFOR.

Opis techniczny

Jednostka bazowa

Główną zaletą MINIFOR jest to, że wszystkie elementy elektroniczne, zasilacz, promiennik podczerwieni, zawór powietrza, miernik przepływu, kable i przewody są zintegrowane w jednej stacji bazowej, która jest wykorzystywana jako podstawa dla naczynia fermentacyjnego i innych akcesoriów. Układ platformy stacji bazowej sprawia, że wszystkie części fermentora są wyraźnie widoczne i łatwo dostępne ze wszystkich stron pomimo wymiarów bazy wynoszących tylko 22 x 40 cm (ok. A4 arkuszy papieru).

Do pięciu butelek z odczynnikami może być umieszczonych w magnetycznych uchwytach z tyłu naczynia fermentacyjnego oraz do czterech pomp w regulowanych uchwytach zamocowanych na prętach w tylnej części jednostki bazowej. Gniazda znajdują się na tylnej części jednostki bazowej eliminując tym samym kable z miejsca pracy.

Pomiary i regulacja

Panel sterowania składa się z wyświetlacza LCD oraz przycisków. Wszystkie parametry (temperatura, pH, pO2, przepływ powietrza, mieszanie i jeden parametru do wyboru, np. pCO2, gęstość optyczna, przeciwpienny itp.) są widoczne na pierwszy rzut oka na dużym podświetlanym wyświetlaczu LCD (4 × 40 cyfr). Sterowanie jest proste i intuicyjne.

Dla większości parametrów może zostać ustawiony alarm dla granicznych (niskich i wysokich) wartości. Po aktywacji alarmu następuje emisja sygnału dźwiękowego oraz pojawia się informacja na wyświetlaczu. Każdy fermentor może być obsługiwany w sposób niezależny lub może być połączony z komputerem (przez RS 485 łub RS 232) z wykorzystaniem specjalnego programu do fermentacji FNet (do 6 fermentorów równolegle) lub oprogramowanie SIAM. Ten ostatni pozwala na niemal nieograniczone możliwości kontroli i przetwarzania danych.

Naczynie fermentacyjne

Standardowe naczynie fermentacyjne posiada objętość roboczą do 1,7 litra (inne naczynia o objętościach roboczych od 35 ml do max 6 litrów mogą być również dostarczone). Naczynia są wykonane z wysokiej jakości szkła Pyrex z jednym dużym centralnie ułożonym gwintowanym otworem do mocowania membrany i wibracyjnego mieszalnika oraz 6 do 8 gwintowanych szyj przeznaczonych do podłączenia różnych czujników, ujścia powietrza, poboru próbek, podania szczepionek, itp. Regulowany uchwyt utrzymuje naczynie w stałej pozycji. Naczynie fermentacyjne sterylizuje się w autoklawie.

Wymiary

Włożone wiele starań, aby kompaktowe urządzenie MINIFOR było jak najmniejsze. Układ platformy fermentora pozwala na łatwą kontrolę i dostęp do wszystkich części ze wszystkich stron. Odległości pomiędzy butelkami z odczynnikami, pompami i naczyniem fermentacyjnym są możliwe najmniejsza.

Mieszanie

Zamiast tradycyjnego mieszadła śmigłowego w bioreaktorze zostało wykorzystane nowe mieszadło wibracyjne. Mocny silnik porusza jeden lub więcej dysków mieszających w górę i w dół. Główną zaletą jest skuteczne mieszanie i napowietrzanie pożywki hodowlanej wraz z wysoce kompletnym oddzieleniem wnętrza zbiornika od środowiska zewnętrznego poprzez niedrogą membranę silikonową. Nie powstaje wir i przegrody są wyeliminowane. Ten typ mieszania jest łagodniejszy dla komórek i pienienie jest zmniejszone. Bardzo skuteczne mieszanie uzyskuje się dzięki wprowadzeniu nowatorskiego elastycznego mieszadła w kształcie „rybiego ogona”. Pozwala to na uzyskanie maksymalnej wydajności mieszania bez obecności krawędzi tnących – jest to optymalny wybór dla kultur komórkowych. Częstotliwość mieszania jest sterowana przez mikroprocesor i może być zmieniana w szerokim zakresie. Wejście powietrza odbywa się poprzez elastyczną samoczyszczącą się mikro-bełkotkę.

Regulacja temperatury

Nowy promiennik podczerwieni (IR) z pozłacanym parabolicznym reflektorem służy do ogrzewania brzeczki hodowlanej. Promieniowanie cieplne (150 W) koncentruje się na dnie zbiornika gdzie jest absorbowane przez medium w sposób podobny do ogrzewania wody przez słońce. Nie występuje przegrzanie w jakiejkolwiek objętości (powszechne gdy grzałki są umieszczone bezpośrednio w medium hodowlanym). Dzięki niskiej przepustowości cieplnej źródła promieniowania podczerwieni możliwość przekroczenia temperatury jest zmniejszona, a temperatura może być dokładniej kontrolowana. Czujnik temperatury jest umieszczony bezpośrednio w czujniku pH i jest używany jednocześnie do automatycznej regulacji elektrody pH i pO2.

Pomiar i kontrola pH

Wartość pH mierzy się za pomocą sterylizowalnej elektrody pH z wbudowanym czujnikiem temperatury. Dzięki wykorzystaniu wtyczki VarioPin może być sterylizowana bez żadnej ochrony. Dwupunktowa kalibracja elektrody jest półautomatyczna. Wartość pH ma automatyczną korekcję temperatury. Dodanie kwasu lub zasady jest sterowane przez mikroprocesor. Szybkość przepływu pomp perystaltycznych PRECIFLOW, MULTIFLOW, HIFLOW lub MAXIFLOW jest zróżnicowana w zakresie od 0 do 100 %, co sprawia, że kontrola pH przebiega płynniej niż w powszechnie występujących pompach o stałej prędkości przepływu. Unikalny PUMP FLOW INTEGRATOR (opcjonalnie) w połączeniu z pompą umożliwia monitorowanie aktywności pompy podczas procesu. Daje to dokładne dane kinetyczne dotyczące stanu kultury i jej aktywności.

Pomiar i regulacja pO2

Sterylizowalna elektroda typu Clark o dużej mierzalności stężenia tlenu rozpuszczonego wykonana ze szkła wzmocnionego teflonową membraną daje szybki czas reakcji i krótką polaryzację. Główna część membrany jest chroniona przed urazami mechanicznymi przez cienką ściankę PEEK. Mikroprocesor wykonuje półautomatyczną dwupunktową kalibrację z automatyczną kompensacją temperatury. Regulację rozpuszczonego tlenu uzyskuje się przez zmianę szybkości przepływu powietrza.

Wejście powietrza

Przepływ można ustawić od 0 do 5 l/min w 0,01 l/min odstępach. Został użyty precyzyjny miernik przepływu mas. Pomiar ten jest niezależny od ciśnienia i zmian temperatury powietrza. Powszechnie stosowane rotametry nie dają w tym przypadku dokładnych odczytów. Zastrzeżony proporcjonalny zawór powietrza reguluje przepływ ciągły.

Została opracowana nowa samooczyszczająca się elastyczna mikro-bełkotka. Jej specjalna konstrukcja umożliwia automatyczną eliminację osadów solnych, które blokują przepływ powietrza w normalnych bełkotkach. Jest to szczególnie ważne dla mikro-bełkotek o bardzo wąskich kanałach.

Wyjście powietrza

Zużyte powietrza jest chłodzone w szklanej chłodnicy ze szkła i filtrowane przez filtr PTFE (teflon). Opcjonalny kondensator Peltiera, który nie wymaga chłodzenia wodą, może być stosowany do usuwania pary wodnej ze strumienia powietrza.

Szczepienie i pobieranie próbek

Szczepienie, dodawanie kwasu lub zasady oraz pobieranie próbek odbywa się za pośrednictwem czterech kapilar ze stali nierdzewnej wyposażonych w podwójne uszczelnienie LAMBDA PEEK.

Wysokiej jakości pompy perystaltyczne

Do czterech wysokiej jakości pomp perystaltycznych PRECIFLOW, MULTIFLOW, HIFLOW lub MAXIFLOW może zostać umieszczonych w uchwytach zamocowanych na dwóch prętach w tylnej części fermentatora. Połączone są one za pomocą jednego przewodu do gniazda z tyłu fermentatora. Ponieważ pompy nie są zintegrowane z fermentorem mogą być wykorzystywane do innych zastosowań laboratoryjnych (np. chromatografii). Stanowi to znaczne oszczędności dla użytkownika.

Nowy system połączenia zapewnia podwójne uszczelnienie rurki w związku z tym, silnie zmniejsza prawdopodobieństwo zakażenia podczas przenoszenia roztworów do naczynia.

Regulator przepływu gazu

MASSFLOW LAMBDA jest nowym kontrolerem systemu przepływu mas specjalnie zaprojektowanym do użytku wraz z bioreaktorami i fermentatorami laboratoryjnymi LAMBDA. Umożliwia on kontrolę pH hodowli komórkowej przez kontrolowane dodawanie gazowego CO2, kontrolę azotu lub innego gazu z odpowiedniego regulatora. Jednakże, może być również stosowany zupełnie niezależnie, ponieważ wszystkie funkcje mogą być dostępne z przedniego panelu MASSFLOW.

Wysokiej jakości laminarny czujnik przepływu mierzy szybkość przepływu. Wynik pojawia się na wyświetlaczu cyfrowym. Regulator przepływu ma bardzo niski spadek ciśnienia i liniowy błąd jest niższy niż ± 3 % odczytu. Powtarzalność jest lepsza niż ± 0,5 % odczytu. Szybkość przepływu jest regulowana przez specjalny zastrzeżony zawór igłowy kontrolowany przez mikroprocesor. Szybkość przepływu może być zaprogramowana, a objętości sumowane. MASSFLOW umożliwia precyzyjną, automatyczną kontrolę pH w kulturach komórkowych, bez potrzeby użycia jakiejkolwiek innej stacji gazowej.

Fermentacja ciągła (chemostat)

Skala adaptera (opcjonalnie) pozwala na ważenie fermentatora. Jest on umieszczony pod przednią częścią korpusu fermentatora i połączony z wejściem X w fermentorze. Przy pomocy pompy połączonej z gniazdem „Pomp X” w fermentatorze waga (objętość) kultury mogą być utrzymywane na stałym poziomie. Ta funkcja jest już zawarta w zestawie startowym. Pozwala to na ciągły bieg hodowli przy utrzymaniu niskich kosztów.

Program PC

FNet został specjalnie opracowany w celu monitorowania i kontroli procesów fermentacyjnych i kultur komórkowych w fermentatorze LAMBDA MINIFOR. Oprogramowanie działa w systemach Windows NT, 2000, XP, Vista, Windows 7, 8 i 10:

  • Łatwy w instalacji i obsłudze
  • Nie ma potrzeby znajomości oprogramowania
  • Rozpoznaje podłączenie kadzi fermentacyjnych przy rozruchu
  • Do 6 fermentatorów, 12 integratorów i 6 pomp na jednym komputerze
  • Wszystkie kable wykorzystują standardowe złącza

Dla bardzo wysokich wymagań, proponujemy oprogramowanie fermentacji SIAM. Prawie nie występują wymaganie, które nie mogą zostać spełnione z SIAM. Funkcje mogą być dodawane zgodnie z potrzebami użytkownika.

Parametry techniczne

Fermentator/bioreaktor LAMBDA MINIFOR jest kontrolowany przez dwa mikroprocesory.

Zasilanie: sieciowe 100–240 V AC / 50–60 Hz, 510 W, zgodne z CE

Wymiary: 22 × 40 × 38cm (W × D × H)

Wyświetlacz: LCD 4×40 znaków z podświetleniem

Naczynie fermentacyjne: szkło Pyrex z 6 do 8 bocznymi szyjami: 0,3; 0,4; 1; 3 i 7 l

Pojemność robocza: 35 ml do ponad 6 litrów

Regulacja temperatury: źródło promieniowania cieplnego IR z pozłacanym reflektorem 150 W

Regulacja: od 5 °C powyżej temperatury pokojowej do ponad 70 °C

Pomiar: od 0 do 99,9 °C w 0,1 °C odstępach

Dokładność: ± 0,2 °C (0 do 60 °C)

Czujnik: PT 100 połączony z czujnikiem pH
Kontrola pH: sterylizowalna elektroda pH (Mettler), pH 0-13, z automatyczną korekcją temperatury, złącze VarioPin, półautomatyczna dwupunktowa kalibracja
Rozdzielczość: 0,01 jednostki pH
Dokładność: ± 0,02 jednostki pH

Pompy: do 4 niezależnych pomp perystaltycznych (PRECIFLOW, MULTIFLOW, HIFLOW lub MAXIFLOW) ze zmienną prędkością od 0 do 100 % może być stosowanych z MINIFOR

Kontrola pO2: sterylizowany czujnik tlenu typu Clark, korpus PEEK, membrana Mettler, automatyczna korekcja temperatury
Zakres: od 0 do 25 mg tlenu/l, w 0,1 mg/l odstępach, automatyczne sterowanie poprzez regulację przepływu powietrza
Przepływ powietrza: od 0 do 5 l min. w 0,01 l/min. odstępach, miernik przepływu, liniowość ± 3 %,
Powtarzalność: ± 0,5 %
Kontrola: zawór proporcjonalny

Dla dostarczonego ciśnienia powietrza: pomiędzy 0,05–0,2 MPa (max.)

Mieszanie: 50 W mieszadło wibracyjne 0 do 20 Hz (0 do 1200 obrotów na minutę), w 0,1 Hz odstępach, 1 lub więcej dysków mieszających

Parametry do wyboru: dodatkowy parametr może być kontrolowany przez urządzenie (kontrola pienienia, pCO2, gęstość optyczna, przewodność, itp.)

Pobieranie prób/dodawanie portów: do 4 igieł ze stali nierdzewnej z podwójnym uszczelnieniem LAMBDA PEEK może być wykorzystywanych do pobierania próbek i dodawania roztworów korygujących

Temperatura pracy: 0–40 °C

Wilgotność względna pracy: 0–90% RH (bez kondensacji)

Bezpieczeństwo: zgodne z normą IEC 1010/1

Waga: 7,5 kg

Kontrola PC: pełna kontrola PC i obróbka danych za pomocą FNet lub oprogramowania SIAM (opcjonalnie)

Gwarancja: 2 lata

Zasilanie: Universal power supply for mains 100-245 V AC/50-60Hz, 560W, CE conform
Wymiary: 22 x 40 x 38 cm (W x D x H)
Wyświetlacz: LCD 4 x 40 digits with backlight illumination
Naczynie fermentacyjne: Pyrex glass with 6 to 8 side necks; 0.3, 0.4, 1, 3, 7 liter vessels
Regulacja temperatury: High efficiency 150 W infrared (IR) radiation heat source with gilded parabolic reflector
Regulacja: from 5°C over RT to 70°C
Pomiar: from 0 to 99.9°C in 0.1°C steps
Dokładność: +/- 0.2°C (0 to 60°C)
Czujnik: Pt 100 incorporated in the glass electrode of the pH probe
Kontrola pH: sterilisable pH electrode pH 0-14 with automatic temperature correction, two-point semiautomatic calibration and Variopin connector
Rozdzielczość: 0.01 pH unit
Dokładność: +/- 0.02 pH unit
Kontrola pO2: sterilisable Clark type oxygen sensor with fast response, automatic temperature correction, two-point semiautomatic calibration, dissolved oxygen (DO) control through regulation of the airflow rate
Zakres: 0 to 25 mg oxygen/ l, in 0.1 mg/l steps
Przepływ powietrza: 0 to 5 l/min in 0.01 l/min steps, measured by precise mass flow meter, linearity +/- 3%, reproducibility +/- 0.5%
Kontrola: proportional valve controlled by microprocessor
Dla dostarczonego ciśnienia powietrza: 0.05 – 0.2 MPa (0.5 - 2 atm)
Mieszanie: 50 W Vibromixer 0 to 20 Hz (0 to 1200 rpm) in 0.1 Hz steps (6 rpm) with 1 or more stirring discs; Sterility similar to magnetic coupling
Parametry do wyboru: an additional parameter can be controlled by the instrument (foaming control, weight (for continuous cultures), pCO2, redox potential, conductivity, optical density, etc.); with standard 0-10V or 0-20mA output
Pobieranie prób/dodawanie portów: One large quadruple sampling or additions port with four needles with LAMBDA PEEK double-seal connections, used for sampling, inoculation, antifoam, feeds, harvest, addition of correction solutions etc., additional double ports are available.
Pompy: up to 4 independent pumps (PRECIFLOW, MULTIFLOW, HIFLOW or MAXIFLOW) with speed variation from 0 to 100 % can be used with MINIFOR lab fermenter-bioreactor
Gas flow control: In addition to pumps, several electronic flow controllers with flow rate ranges of 0-5 l/min (MASSFLOW 5000) or 0-500 ml/min (MASSFLOW 500) can be used for the controlled addition of gases (e.g. N2, O2, air, CO2) in cell cultures; freely configurable gas station module
Temperatura pracy: 0 – 40 °C
Wilgotność względna pracy: 0 - 90 % RH, not condensing
Waga: 7.5 kg
Kontrola PC: complete PC control and data processing using the fermentation software FNet (for up to 6 MINIFOR fermenters) or SIAM (for an even higher number of instruments)

2017: LAMBDA MINIFOR bioreactor for the production of CB.Hep-1 mAb using mouse hybridoma cell culture in protein-free media
Valdés R, Aragón H, González M, Hernández D, Geada D, Goitizolo D et al. Mouse hybridoma cell culture in a protein-free medium using a bio-mimicking fish-tail disc stirred bioreactor. BioProcess J, 2017; 16(1): 51–64.
CIGB, Havana, Cuba.


2016: Robust cellulosic ethanol production from sugarcane bagasse with Saccharomyces cerevisiae ATCC 20602 in LAMBDA MINIFOR laboratory bioreactor under aerobic and anaerobic conditions with controlled redox potential measurement
Jabasingh, S. Anuradha, et al. "Catalytic conversion of sugarcane bagasse to cellulosic ethanol: TiO2 coupled nanocellulose as an effective hydrolysis enhancer." Carbohydrate polymers 136 (2016): 700-709.
Addis Ababa Institute of Technology, Ethiopia; Sathyabama University, India.
Keywords: Cellulosic ethanol; bagasse; Titanium dioxide; Nanocellulose; Cellulase Saccharomyces cerevisiae


2015: S. pyogenes Cas9 protein expressed using a 3L computer-controlled MINIFOR bioreactor in batch medium followed by exponential feeding
Ménoret, Séverine, et al. "Homology-directed repair in rodent zygotes using Cas9 and TALEN engineered proteins." Scientific reports 5 (2015): 14410.
INSERM UMR 1064-ITUN; CNRS UMS3556 Nantes; CNRS UMR7196; Sorbonne Universities; University Pierre & Marie Curie; France.


2015: Fermentation of engineered microorganism in laboratory scale bioreactor MINIFOR for efficient conversion of lactose-to-ethanol
Pasotti, Lorenzo, et al. "Methods for genetic optimization of biocatalysts for biofuel production from dairy waste through synthetic biology." Engineering in Medicine and Biology Society (EMBC), 2015 37th Annual International Conference of the IEEE. IEEE, 2015.
University of Pavia, Department of Electrical, Computer & Biomedical Engineering and Interdepartmental Research Centre for Tissue Engineering, Italy
Keywords: lactose-to-ethanol conversion; microorganism optimization; synthetic biology; whey protein; permeate; pollutant waste disposal; genetic optimization; green energy production; biofuel production; cheese production process; dairy waste; biocatalyst


2015: Six-species flow cell biofilm model was developed by culturing bacteria in LAMBDA MINIFOR Bioreactor to evaluate the biofilm development under flow and shear conditions
Salli, Krista M., and Arthur C. Ouwehand. "The use of in vitro model systems to study dental biofilms associated with caries: a short review." Journal of oral microbiology 7 (2015).
DuPont Nutrition and Health, Kantvik Active Nutrition, Finland.
Keywords: dental caries, batch culture, continuous culture, artificial mouth, flow cell, microcosm 


2015: Quantification of ribosomal proteins (RPs) from Yeast cells cultured in MINIFOR bioreactor and mouse embryonic stem cells (ESC) to study the core RPs stoichiometry
Slavov, Nikolai, et al. "Differential stoichiometry among core ribosomal proteins." Cell reports 13.5 (2015): 865-873.
Harvard University, USA; Broad Institute of MIT and Harvard, USA and Hubrecht Institute, Netherlands.
Keywords: Budding Yeast cells, Embryonic stem cells (ESC), Ribosomal Protein, RP, ribosomes, mRNA, mass-spectrometry, posttranslational modification, PTM


2014: Cultivation of microalgae (Chlorella vulgaris Beyerinck) in laboratory bioreactor MINIFOR
Heitur, Heiko. Mikrovetika Chlorella vulgaris Beyerincki kasvatamine CO2 sidumise eesmärgil. Diss. 2014.
Eesti Maaülikool (Estonian University of Life Sciences), Estonia.
Keywords: CO2, microalgae, growth rate, photobioreactor


2014: Growing yeast cultures (DBY12007) in the MINIFOR fermenter at steady state to study the aerobic glycolysis and energy flux
Slavov, Nikolai, et al. "Constant growth rate can be supported by decreasing energy flux and increasing aerobic glycolysis." Cell reports 7.3 (2014): 705-714.
Massachusetts Institute of Technology, USA; Harvard University, USA; Hubrecht Institute, Royal Netherlands Academy of Arts and Sciences and University Medical Center Utrecht, Netherlands and Princeton University, USA.
Keywords: Yeast, aerobic glycolysis, exponential growth, O2 consumption, CO2 production, amino acids, mRNAs, proteins, posttranslational modifications, stress sensitivity, respiratory quotient (RQ)


2014: Selective and non-selective batch fermentation of date extract using Saccharomyces cerevisiae (commercial strain used in bakeries (wild strain), glucose selective strains ATCC 36858 and ATCC 36859) studied in LAMBDA MINIFOR fermentor
Putra, Meilana Dharma, et al. "Selective fermentation of pitted dates by S. cerevisiae for the production of concentrated fructose syrups and ethanol." Journal of Physics: Conference Series. Vol. 495. No. 1. IOP Publishing, 2014.
King Saud University, Chemical Engineering Department, Saudi Arabia 
Keywords: Selective, non-selective, fermentation, yeast, S. cerevisiae, fructose, ethanol, date, HPLC, kinetic profile, batch


2014: The metabolic stress response of tomato cell culture (Lycopersicum esculentum) to low oxygen studied using LAMBDA MINIFOR Bioreactor
Ampofo‐Asiama, Jerry, et al. "The metabolic response of cultured tomato cells to low oxygen stress." Plant Biology 16.3 (2014): 594-606.
KU Leuven, Belgium; Flanders Centre of Postharvest Technology (VCBT), Leuven, Belgium;
Keywords: 3C label; cell culture; low O2 stress; Lycopersicum esculentum; metabolome


2014: LAMBDA MINIFOR bioreactor to grow the oral bacteria (Streptococcus oralis, Actinomyces naeslundii, Veillonella parvula, Fusobacterium nucleatum, Aggregatibacter actinomycetemcomitans and Porphyromonas gingivalis) under planktonic conditions
Blanc, V., et al. "Characterization and application of a flow system for in vitro multispecies oral biofilm formation." Journal of periodontal research 49.3 (2014): 323-332.
DENTAID S. L., Cerdanyola del Vallès, Spain; ETEP Research Group, University Complutense of Madrid, Spain;
Keywords: biofilm model; chlorhexidine; confocal laser scanning microscopy; oral bacteria


2013: Recombinant expression of the Met-CCL5, protease resistant CXCL12 (S4V) and F1-CX3CL1 in E. coli using MINIFOR fermenter/bioreactor to study their role in Cardiovascular disease (CVD)
Projahn, Delia, and Christian Weber. Generation, function and therapeutic application of chemotactic cytokines in cardiovascular diseases. Diss. Hochschulbibliothek der Rheinisch-Westfälischen Technischen Hochschule Aachen, 2013.
RWTH Aachen, Germany.


2013: Expression of Caf1 protein using Escherichia coli strain in MINIFOR fermentor to study mammalian cell adhesion, shape and number of focal adhesion
Machado Roque, Ana Isabel. "Protein scaffolds for cell culture." (2013).
Newcastle University, UK.


2013: LAMBDA MINIFOR Bioreactor used for recombinant protein (Chemokines) expression in E. coli
Kramp, Birgit, and Robert Ryan Koenen. Establishing the interaction between the CC chemokine ligand 5 and the receptors CCR1 and CCR. Diss. Hochschulbibliothek der Rheinisch-Westfälischen Technischen Hochschule Aachen, 2013.
RWTH Aachen, Germany.


2013: Systems for High-Density Hybridoma Growth and High-yield mAb production in cell culture: Bench-top stirred tank bioreactors, 1-5 L (MINIFOR - LAMBDA Laboratory Instruments)
Kase, Matthew R., ed. Making and using antibodies: a practical handbook. CRC press, 2013.


2013: Controlled growth of Staphylococcus aureus under various concentrations of BAC (benzalkonium chloride) in MINIFOR fermentor
Cervinkova, Dana, et al. "The role of the qacA gene in mediating resistance to quaternary ammonium compounds." Microbial Drug Resistance 19.3 (2013): 160-167.
Veterinary Research Institute, Brno, Czech Republic.
Keywords: Staphylococcus aureus, benzalkonium chloride (BAC), exponential phase, expression, real-time PCR, culture, concentration


2012: Effective production of Biobutanol from agricultural waste (giant hogweed, hay) using MINIFOR bench-top laboratory fermenter
Mezule, L., et al. "Biobutanol production from agricultural waste: A simple approach for pre-treatment and hydrolysis." Latvian Journal of Chemistry 51.4 (2012): 407-414.
Riga Technical University, Latvia 
Keywords: biofuel, biobutanol, agricultural waste, hydrolysis


2012: MINIFOR Bioreactor for stem cells
Shayan, Niloufar, et al. "A non-rotational, computer-controlled suspension bioreactor for expansion of umbilical cord blood mononuclear cells." Biotechnology letters 34.11 (2012): 2125-2131.
Department of Regenerative Medicine, Cell Research Center, Royan Institute for Stem Cell Biology and Technology, Royan Cord Blood Bank, Tehran, Iran; Department of Stem Cells and Developmental Biology, Cell Research Center, Royan Institute for Stem Cell Biology and Technology, ACECR, Tehran, Iran 
Keywords: Static culture; Suspension bioreactor; Umbilical cord blood; Vertical mixing


2011: Bioethanol production using Yeast (S. cerevisiae) in LAMBDA MINIFOR fermenter
Burešová, Iva, and Luděk Hřivna. "Effect of wheat gluten proteins on bioethanol yield from grain." Applied Energy 88.4 (2011): 1205-1210.
Agrotest Fyto, Ltd., Kroměříž, Czech Republic; Mendel University in Brno, Czech Republic 
Keywords: Bioethanol; Triticale; Wheat; Gluten; Protein


2010: Anaerobic fermentation of the glucose component in dates extract by yeast Saccharomyces cerevisiae
Gaily, Mohamed H., et al. "A Direct Process for the Production of High Fructose Syrups from Dates Extracts." International Journal of Food Engineering 6.3 (2010): 12.
King Saud University, Saudi Arabia; University of Khartoum, Sudan 
Keywords: dates, fructose, glucose, ethanol, fermentation, S. Cerevisiae, yeast, mesophilic, batch


2007: Anaerobic expression using the LAMBDA MINIFOR
Park, Myong-Ok, Taeko Mizutani, and Patrik R. Jones. "Glyceraldehyde-3-phosphate ferredoxin oxidoreductase from Methanococcus maripaludis." Journal of bacteriology 189.20 (2007): 7281-7289.
Research and Development Division, Fujirebio Incorporated, Japan.


2005: pH and temperature continuously recorded with the LAMBDA MINIFOR and SIAM software
Chaignon, Philippe, et al. "Photochemical reactivity of trifluoromethyl aromatic amines: the example of 3, 5-diamino-trifluoromethyl-benzene (3, 5-DABTF)." Photochemistry and photobiology 81.6 (2005): 1539-1543.
Institut de Chimie des Substances Naturelles, C.N.R.S, France.


 

Do you sell/ship to the USA?

Yes, we do supply our instruments directly with door-to-door delivery option by the parcel services to the USA.


What is the availability of the product?

We have the instruments in stock. We would just have to configure the instruments according to your requirements and perform quality control before shipping. 


 Is there a warranty?

We offer a 2 year warranty for MINIFOR fermentor / bioreactor and 5 year warranty for the PRECIFLOW & MULTIFLOW peristaltic pumps.


Does this fermentor work on both mammalian cells and yeast cells?

Yes, MINIFOR fermentor and bioreactor can be used for mammalian and yeast cell cultures (More information at www.fermentor.net/applications).


Is there flexibility in the top plate to add or remove probes?

Yes, MINIFOR has free ports in the headspace for the additional probes (sensors). Multiple ports and other effective solutions in the fermentation glass vess make the MINIFOR configuration equivalent to 16 to 22 classical ports (it is possible to increase the number of ports – custom made solution)


Is the equipment suitable for use in pure / mixed culture?

Yes, MINIFOR is suitable for pure as well as mixed culture. The stirrer is strong and can easily be adapted according to the types of cultures and working volumes.


Why is MINIFOR perfectly suitable for parallel processes?

Each unit stays independent as it is equipped with a control panel and display and at a single glance shows the parameter values. All parameters are regulated locally inside each fermenter-bioreactor unit.

This allows fast and precise parameter regulation and never having to worry about leaving a vessel unattended. Further advantage is that in case there are problems with one unit, the other units will still keep running.


How important is the slowdown in parameter regulation while running 12 bioreactors in parallel?

An important aspect to consider – which, however, does not play a role in the LAMBDA MINIFOR parallel system because each MINIFOR fermenter comes with its proper regulation unit that measures and controls all parameters locally. As a consequence the quality of the measurement and regulation is not affected by long transmission times and dead times in regulation.


How much space does a MINIFOR unit require?

Footprint: approximately a sheet of paper
Dimensions: 22 cm x 38 cm x 40 cm (W x H x D)

Fermentacja ciągła (chemostat) Zobacz więcej
REDOX potential measurement Zobacz więcej
MINI-4-GAS Automatic gas-mix Zobacz więcej
Automatic antifoam control Zobacz więcej
FNet Programa de Control de la Fermentación Program PC - FNet Zobacz więcej
SIAM industrial fermentation software Zobacz więcej
MINI-4-GAS software Zobacz więcej
OXYMETER O2 concentration measurement (0-25%) Zobacz więcej
CARBOMETER CO2 concentration measurement (0-100%) Zobacz więcej
METHAMETER CH4 concentration measurement (0-100%) Zobacz więcej
Additional PRECIFLOW pump line PRECIFLOW pump 0-600 ml/h, reagent bottle with pipes, fittings, filter, tubing Zobacz więcej
Additional MULTIFLOW pump line MULTIFLOW pump, reagent bottle with pipes, fittings, filter and tubing Zobacz więcej