Fermentador y biorreactor

Fermentador y biorreactor

Innovador fermentador / biorreactor de gran calidad a la mitad del costo. Nuevo concepto en fermentación y cultivo celular

Fermentador LAMBDA MINIFOR - Descripción de fermentador de laboratorio

Fermentador MINIFOR: Mediante la introducción de varias ideas e innovaciones hemos logrado producir un excelente fermentador-biorreactor a la mitad del costo, sin comprometer su calidad.

LAMBDA MINIFOR Fermentador-Biorreactor

  • Nuevo frasco o vaso de reacción de vidrio con cuellos laterales con rosca y un soporte de fijación
  • Nuevo mezclador vibrador con membrana de silicona (vibromixing) en lugar de un costoso agitador magnético en hélice, que garantiza una esterilidad a largo plazo
  • Volúmenes de cultivo desde 35 mL hasta más 6 litros en un sólo equipo
  • El nuevo radiador patentado IR (infrarrojo) con un reflector parabólico banado en oro se utiliza para calentar suavemente el medio de cultivo (sin costosos banos termostáticos)
  • Materiales de alto rendimiento reemplazan las costosas piezas de acero inoxidable en otros fermentadores
  • Compacto y práctico, de fácil acceso desde cualquier ángulo
  • Nueva agitación “fish-tail” (cola de pez) para suave mezclado en cultivos celulares
  • Para cultivos continuos, procesos batch y fed-batch
  • Indicado para la fermentación en paralelo
  • Regulación precisa de gas por caudalímetro másico
  • Control automático de formación de espuma (opcional)
  • Montaje y desmontaje en tiempo mínimo
  • Fácil sistema de esterilidad (“easy sterility”)
  • Fácil operación y programación
  • Esterilizable en autoclave común
  • Autónomo o controlable por PC (software de control FNet o SIAM)

La necesidad de un pequeno fermentador de laboratorio para volúmenes desde 0.035 hasta más de 6 litros nos llevó a la fabricación del MINIFOR.

Vasos de reacción autoclaveables: Volúmenes de trabajo desde 35 ml hasta 6 l

Con base en nuestra vasta experiencia en fermentación, quisimos desarrollar un fermentador que fuera fácil de usar y que tuviera la capacidad de medir y controlar todos los parámetros importantes requeridos en un cultivo biológico. Para cumplir dicha función, el fermentador debe ocupar un mínimo de espacio en el laboratorio, pero dejando buen acceso a todas sus partes.

Para la optimización de los parámetros de crecimiento del cultivo o de la biotransformación, debe ser posible colocar varios fermentadores uno al lado del otro. Cada fermentador debe ser capaz de trabajar independientemente o conectado a un PC, para una avanzada regulación y procesamiento de datos.

Con el fin de mantener el bajo costo del Fermentador MINIFOR, hemos introducido varias ideas e innovaciones sin comprometer su calidad:

En lugar de un frasco con una costosa cubierta de acero inoxidable, utilizamos un recipiente o vaso de reacción de vidrio con cuellos laterales con rosca, sistema que ha sido utilizado por muchos anos en el área del cultivo celular para mantener la esterilidad.

En lugar del tradicional agitador de hélice, que requiere de un costoso motor y acoplamiento magnético, hemos introducido un nuevo sistema de vibración. Un electroimán y una económica membrana aseguran una perfecta esterilidad y garantizan una mezcla efectiva, sin la formación de vórtices en el medio. No se precisan baffles (deflectores). Al mismo, tiempo este tipo de mezclador es más suave con las células y produce menos espuma.

El cultivo es calentado a través de la radiación de calor producida por un radiador con un reflector parabólico banado en oro, localizado debajo del recipiente fermentador. De esta manera el cultivo es calentado suavemente de modo similar al que el sol calienta el agua. Así no habrá sobrecalentamiento del cultivo, como generalmente ocurre cuando el calentador está colocado dentro del medio. Los costosos frascos de doble pared y banos termostáticos quedan eliminados, al mismo tiempo que los tubos y cables, haciendo al fermentador menos complejo.

Algunas partes metálicas han sido reemplazadas por unas nuevas de materiales plásticos de alta calidad.

Con la implementación de modernos microprocesadores, ha sido posible situar toda su electrónica en la parte frontal del aparato, eliminando así la carcasa de los fermentadores tradicionales. Esto hace al fermentador increíblemente compacto. A pesar de su pequeno tamano, el MINIFOR tiene la capacidad de medir y controlar 6 parámetros en la configuración básica del MINIFOR. 

Alimentación: Fuente de energía universal para 100-245 V AC/50 -60 Hz, 560 W, conforme con la CE
Dimensiones: 22 x 40 x 38 cm (A x D x H)
Visualizador: LCD de 4 x 40 dígitos con iluminación de fondo
Frasco fermentador: Vasos de 0,3, 0,4, 1,3, y 6 L de vidrio de borosilicato Pyrex con 6-8 cuellos con roscas
Control de temperatura: Fuente de calor mediante radiaciones infrarrojas (IR) de alta eficiencia de 150 W con reflector parabólico dorado
Regulación: Desde 5°C sobre la temperatura ambiente hasta 70°C
Medición: Desde 0 hasta 99.9°C en pasos de 0.1°C
Precisión: +/- 0.2°C (0 hasta 60°C)
Sensor: Pt 100 incorporada en el electrodo de cristal o vidrio de electrodo de pH
Control del pH: Un electrodo de pH 0 - 14 esterilizable, con corrección automática de la temperatura, calibración semiautomática de dos puntos y conector Variopin
Resolución: 0.01 pH unidades
Precisión: +/- 0.02 pH unidades
Control pO2: El electrodo de oxígeno tipo Clark esterilizable con una respuesta rápida, corrección automática de la temperatura, calibración semiautomática de dos puntos, y control de oxígeno disuelto (OD) a través de la regulación del flujo de aire
Rango: 0 hasta 25 mg de oxígeno/l, en pasos de 0.1 mg/l
Flujo de aire: De 0 a 5 l/min en pasos de 0,01 l/min, medido por un preciso de flujo de masa, linealidad +/- 3%, reproducibilidad +/- 0,5%
Control: Válvula proporcional controlada por microprocesador
Presión del aire: 0.05 – 0.2 MPa (0.5 - 2 atm)
Agitación: Vibromezclador de 50 W de 0 a 20 Hz (de 0 a 1200 rpm) en intervalos o pasos de 0,1 Hz (6 rpm) con 1 o más discos de agitación; esterilidad similar al acoplamiento magnético
Parámetro adicional: Un parámetro adicional puede ser controlado por el instrumento (formación de espuma, el peso (para cultivos continuos), pCO2, potencial redox, conductividad, etc); con normas o estándares de salida de 0-10V o 0-20mA
Ports / side necks: Un puerto de muestreo cuádruple o para adiciones con 4 agujas con conexiones de LAMBDA-PEEK con doble sello usados para muestreo, inoculación, anti-espumante, suministro de medio, etc, puertos adicionales dobles están disponibles
Bombas: Hasta 4 bombas independientes (PRECIFLOW, MULTIFLOW, HIFLOW o MAXIFLOW) con variación de la velocidad de 0 a 100% pueden ser utilizadas con el bioreactor - fermentador de laboratorio MINIFOR
Control de flujo de gas: Además de las bombas, varios controladores electrónicos de flujo con intervalos de flujo de 0 - 5 l/min (MASSFLOW 5000) ó 0 - 500 ml/min (MASSFLOW 500) puede usarse para la adición regulada de los gases (Ej, N2, O2, aire, CO2) en cultivos celulares; módulo de estación de gases de configuración libre
Temperatura de trabajo: 0 - 40 °C
Humedad relativa: 0 - 90 % RH, sin condensación
Peso: 7.5 kg
Control PC: Control completo mediante el ordenador y el procesamiento de datos de la fermentación utilizando el programa FNet (para un máximo de 6 fermentadores MINIFOR) o SIAM (para un número aún mayor de instrumentos)

2018: MINIFOR lab scale bioreactor used for production of bioethanol from lignocellulosic biodegradable municipal solid waste (BMSW) under optimized conditions

Hayder, Nadhim H., Hussain M. Flayeh, and Ali W. Ahmed. "Optimization of Bioethanol Production from Biodegradable Municipal Solid Waste using Response Surface Methodology (RSM)." Journal of Engineering and Sustainable Development Vol 22, no. 01 (2018).

Baghdad University, Biotechnology Department and  Environmental Engineering Department, Baghdad, Iraq.

Keywords:  Biodegradable municipal solid waste; Bioethanol; Fermentation; Bioreactor


2017: Efficient ethanol production from whey permeate (WP) and concentrated permeate (CWP) with engineered E. coli in pH-controlled bioreactor MINIFOR
Pasotti, Lorenzo, Susanna Zucca, Michela Casanova, Giuseppina Micoli, Maria Gabriella Cusella De Angelis, and Paolo Magni. "Fermentation of lactose to ethanol in cheese whey permeate and concentrated permeate by engineered Escherichia coli." BMC biotechnology 17, no. 1 (2017): 48.
University of Pavia, Laboratory of Bioinformatics, Mathematical Modelling and Synthetic Biology, Department of Electrical, Computer and Biomedical Engineering, Pavia, Italy; University of Pavia, Centre for Health Technologies, Pavia, Italy.
Keywords: Ethanol; Lactose; Fermentation; Escherichia coli; Whey permeate


2017: The effect of different temperatures on sugar starvation in cells isolated from fresh leafy vegetables was studied in MINIFOR bioreactor
Mbong, Victor Baiye Mfortaw, Jerry Ampofo-Asiama, Maarten LATM Hertog, Annemie H. Geeraerd, and Bart M. Nicolai. "The effect of temperature on the metabolic response of lamb’s lettuce (Valerianella locusta,(L), Laterr.) cells to sugar starvation." Postharvest Biology and Technology 125 (2017): 1-12.
KU Leuven, Division of Mechatronics, Biostatistics and Sensors (MeBioS), Department of Biosystems (BIOSYST), Leuven, Belgium; Flanders Centre of Postharvest Technology (VCBT), Leuven, Belgium.
Keywords: Isolated lamb’s lettuce cells; Sugar starvation; Temperature; Metabolome; 13C label


2017: LAMBDA MINIFOR bioreactor for the production of CB.Hep-1 mAb using mouse hybridoma cell culture in protein-free media
Valdés R, Aragón H, González M, Hernández D, Geada D, Goitizolo D et al. Mouse hybridoma cell culture in a protein-free medium using a bio-mimicking fish-tail disc stirred bioreactor. BioProcess J, 2017; 16(1): 51–64.
CIGB, Havana, Cuba.


2016: Robust cellulosic ethanol production from sugarcane bagasse with Saccharomyces cerevisiae ATCC 20602 in LAMBDA MINIFOR laboratory bioreactor under aerobic and anaerobic conditions with controlled redox potential measurement
Jabasingh, S. Anuradha, et al. "Catalytic conversion of sugarcane bagasse to cellulosic ethanol: TiO2 coupled nanocellulose as an effective hydrolysis enhancer." Carbohydrate polymers 136 (2016): 700-709.
Addis Ababa Institute of Technology, Ethiopia; Sathyabama University, India.
Keywords: Cellulosic ethanol; bagasse; Titanium dioxide; Nanocellulose; Cellulase Saccharomyces cerevisiae


2015: S. pyogenes Cas9 protein expressed using a 3L computer-controlled MINIFOR bioreactor in batch medium followed by exponential feeding
Ménoret, Séverine, et al. "Homology-directed repair in rodent zygotes using Cas9 and TALEN engineered proteins." Scientific reports 5 (2015): 14410.
INSERM UMR 1064-ITUN; CNRS UMS3556 Nantes; CNRS UMR7196; Sorbonne Universities; University Pierre & Marie Curie; France.


2015: Fermentation of engineered microorganism in laboratory scale bioreactor MINIFOR for efficient conversion of lactose-to-ethanol
Pasotti, Lorenzo, et al. "Methods for genetic optimization of biocatalysts for biofuel production from dairy waste through synthetic biology." Engineering in Medicine and Biology Society (EMBC), 2015 37th Annual International Conference of the IEEE. IEEE, 2015.
University of Pavia, Department of Electrical, Computer & Biomedical Engineering and Interdepartmental Research Centre for Tissue Engineering, Italy
Keywords: lactose-to-ethanol conversion; microorganism optimization; synthetic biology; whey protein; permeate; pollutant waste disposal; genetic optimization; green energy production; biofuel production; cheese production process; dairy waste; biocatalyst


2015: Six-species flow cell biofilm model was developed by culturing bacteria in LAMBDA MINIFOR Bioreactor to evaluate the biofilm development under flow and shear conditions
Salli, Krista M., and Arthur C. Ouwehand. "The use of in vitro model systems to study dental biofilms associated with caries: a short review." Journal of oral microbiology 7 (2015).
DuPont Nutrition and Health, Kantvik Active Nutrition, Finland.
Keywords: dental caries, batch culture, continuous culture, artificial mouth, flow cell, microcosm 


2015: Quantification of ribosomal proteins (RPs) from Yeast cells cultured in MINIFOR bioreactor and mouse embryonic stem cells (ESC) to study the core RPs stoichiometry
Slavov, Nikolai, et al. "Differential stoichiometry among core ribosomal proteins." Cell reports 13.5 (2015): 865-873.
Harvard University, USA; Broad Institute of MIT and Harvard, USA and Hubrecht Institute, Netherlands.
Keywords: Budding Yeast cells, Embryonic stem cells (ESC), Ribosomal Protein, RP, ribosomes, mRNA, mass-spectrometry, posttranslational modification, PTM


2014: Cultivation of microalgae (Chlorella vulgaris Beyerinck) in laboratory bioreactor MINIFOR
Heitur, Heiko. Mikrovetika Chlorella vulgaris Beyerincki kasvatamine CO2 sidumise eesmärgil. Diss. 2014.
Eesti Maaülikool (Estonian University of Life Sciences), Estonia.
Keywords: CO2, microalgae, growth rate, photobioreactor


2014: Growing yeast cultures (DBY12007) in the MINIFOR fermenter at steady state to study the aerobic glycolysis and energy flux
Slavov, Nikolai, et al. "Constant growth rate can be supported by decreasing energy flux and increasing aerobic glycolysis." Cell reports 7.3 (2014): 705-714.
Massachusetts Institute of Technology, USA; Harvard University, USA; Hubrecht Institute, Royal Netherlands Academy of Arts and Sciences and University Medical Center Utrecht, Netherlands and Princeton University, USA.
Keywords: Yeast, aerobic glycolysis, exponential growth, O2 consumption, CO2 production, amino acids, mRNAs, proteins, posttranslational modifications, stress sensitivity, respiratory quotient (RQ)


2014: Selective and non-selective batch fermentation of date extract using Saccharomyces cerevisiae (commercial strain used in bakeries (wild strain), glucose selective strains ATCC 36858 and ATCC 36859) studied in LAMBDA MINIFOR fermentor
Putra, Meilana Dharma, et al. "Selective fermentation of pitted dates by S. cerevisiae for the production of concentrated fructose syrups and ethanol." Journal of Physics: Conference Series. Vol. 495. No. 1. IOP Publishing, 2014.
King Saud University, Chemical Engineering Department, Saudi Arabia 
Keywords: Selective, non-selective, fermentation, yeast, S. cerevisiae, fructose, ethanol, date, HPLC, kinetic profile, batch


2014: The metabolic stress response of tomato cell culture (Lycopersicum esculentum) to low oxygen studied using LAMBDA MINIFOR Bioreactor
Ampofo‐Asiama, Jerry, et al. "The metabolic response of cultured tomato cells to low oxygen stress." Plant Biology 16.3 (2014): 594-606.
KU Leuven, Belgium; Flanders Centre of Postharvest Technology (VCBT), Leuven, Belgium;
Keywords: 3C label; cell culture; low O2 stress; Lycopersicum esculentum; metabolome


2014: LAMBDA MINIFOR bioreactor to grow the oral bacteria (Streptococcus oralis, Actinomyces naeslundii, Veillonella parvula, Fusobacterium nucleatum, Aggregatibacter actinomycetemcomitans and Porphyromonas gingivalis) under planktonic conditions
Blanc, V., et al. "Characterization and application of a flow system for in vitro multispecies oral biofilm formation." Journal of periodontal research 49.3 (2014): 323-332.
DENTAID S. L., Cerdanyola del Vallès, Spain; ETEP Research Group, University Complutense of Madrid, Spain;
Keywords: biofilm model; chlorhexidine; confocal laser scanning microscopy; oral bacteria


2013: Recombinant expression of the Met-CCL5, protease resistant CXCL12 (S4V) and F1-CX3CL1 in E. coli using MINIFOR fermenter/bioreactor to study their role in Cardiovascular disease (CVD)
Projahn, Delia, and Christian Weber. Generation, function and therapeutic application of chemotactic cytokines in cardiovascular diseases. Diss. Hochschulbibliothek der Rheinisch-Westfälischen Technischen Hochschule Aachen, 2013.
RWTH Aachen, Germany.


2013: Expression of Caf1 protein using Escherichia coli strain in MINIFOR fermentor to study mammalian cell adhesion, shape and number of focal adhesion
Machado Roque, Ana Isabel. "Protein scaffolds for cell culture." (2013).
Newcastle University, UK.


2013: LAMBDA MINIFOR Bioreactor used for recombinant protein (Chemokines) expression in E. coli
Kramp, Birgit, and Robert Ryan Koenen. Establishing the interaction between the CC chemokine ligand 5 and the receptors CCR1 and CCR. Diss. Hochschulbibliothek der Rheinisch-Westfälischen Technischen Hochschule Aachen, 2013.
RWTH Aachen, Germany.


2013: Systems for High-Density Hybridoma Growth and High-yield mAb production in cell culture: Bench-top stirred tank bioreactors, 1-5 L (MINIFOR - LAMBDA Laboratory Instruments)
Kase, Matthew R., ed. Making and using antibodies: a practical handbook. CRC press, 2013.


2013: Controlled growth of Staphylococcus aureus under various concentrations of BAC (benzalkonium chloride) in MINIFOR fermentor
Cervinkova, Dana, et al. "The role of the qacA gene in mediating resistance to quaternary ammonium compounds." Microbial Drug Resistance 19.3 (2013): 160-167.
Veterinary Research Institute, Brno, Czech Republic.
Keywords: Staphylococcus aureus, benzalkonium chloride (BAC), exponential phase, expression, real-time PCR, culture, concentration


2012: Effective production of Biobutanol from agricultural waste (giant hogweed, hay) using MINIFOR bench-top laboratory fermenter
Mezule, L., et al. "Biobutanol production from agricultural waste: A simple approach for pre-treatment and hydrolysis." Latvian Journal of Chemistry 51.4 (2012): 407-414.
Riga Technical University, Latvia 
Keywords: biofuel, biobutanol, agricultural waste, hydrolysis


2012: MINIFOR Bioreactor for stem cells
Shayan, Niloufar, et al. "A non-rotational, computer-controlled suspension bioreactor for expansion of umbilical cord blood mononuclear cells." Biotechnology letters 34.11 (2012): 2125-2131.
Department of Regenerative Medicine, Cell Research Center, Royan Institute for Stem Cell Biology and Technology, Royan Cord Blood Bank, Tehran, Iran; Department of Stem Cells and Developmental Biology, Cell Research Center, Royan Institute for Stem Cell Biology and Technology, ACECR, Tehran, Iran 
Keywords: Static culture; Suspension bioreactor; Umbilical cord blood; Vertical mixing


2011: Bioethanol production using Yeast (S. cerevisiae) in LAMBDA MINIFOR fermenter
Burešová, Iva, and Luděk Hřivna. "Effect of wheat gluten proteins on bioethanol yield from grain." Applied Energy 88.4 (2011): 1205-1210.
Agrotest Fyto, Ltd., Kroměříž, Czech Republic; Mendel University in Brno, Czech Republic 
Keywords: Bioethanol; Triticale; Wheat; Gluten; Protein


2010: Anaerobic fermentation of the glucose component in dates extract by yeast Saccharomyces cerevisiae
Gaily, Mohamed H., et al. "A Direct Process for the Production of High Fructose Syrups from Dates Extracts." International Journal of Food Engineering 6.3 (2010): 12.
King Saud University, Saudi Arabia; University of Khartoum, Sudan 
Keywords: dates, fructose, glucose, ethanol, fermentation, S. Cerevisiae, yeast, mesophilic, batch


2007: Anaerobic expression using the LAMBDA MINIFOR
Park, Myong-Ok, Taeko Mizutani, and Patrik R. Jones. "Glyceraldehyde-3-phosphate ferredoxin oxidoreductase from Methanococcus maripaludis." Journal of bacteriology 189.20 (2007): 7281-7289.
Research and Development Division, Fujirebio Incorporated, Japan.


2005: pH and temperature continuously recorded with the LAMBDA MINIFOR and SIAM software
Chaignon, Philippe, et al. "Photochemical reactivity of trifluoromethyl aromatic amines: the example of 3, 5-diamino-trifluoromethyl-benzene (3, 5-DABTF)." Photochemistry and photobiology 81.6 (2005): 1539-1543.
Institut de Chimie des Substances Naturelles, C.N.R.S, France.


 

Do you sell/ship to the USA?

Yes, we do supply our instruments directly with door-to-door delivery option by the parcel services to the USA.


What is the availability of the product?

We have the instruments in stock. We would just have to configure the instruments according to your requirements and perform quality control before shipping. 


 Is there a warranty?

We offer a 2 year warranty for MINIFOR fermentor / bioreactor and 5 year warranty for the PRECIFLOW & MULTIFLOW peristaltic pumps.


Does this fermentor work on both mammalian cells and yeast cells?

Yes, MINIFOR fermentor and bioreactor can be used for mammalian and yeast cell cultures (More information at www.fermentor.net/applications).


Is there flexibility in the top plate to add or remove probes?

Yes, MINIFOR has free ports in the headspace for the additional probes (sensors). Multiple ports and other effective solutions in the fermentation glass vess make the MINIFOR configuration equivalent to 16 to 22 classical ports (it is possible to increase the number of ports – custom made solution)


Is the equipment suitable for use in pure / mixed culture?

Yes, MINIFOR is suitable for pure as well as mixed culture. The stirrer is strong and can easily be adapted according to the types of cultures and working volumes.


Why is MINIFOR perfectly suitable for parallel processes?

Each unit stays independent as it is equipped with a control panel and display and at a single glance shows the parameter values. All parameters are regulated locally inside each fermenter-bioreactor unit.

This allows fast and precise parameter regulation and never having to worry about leaving a vessel unattended. Further advantage is that in case there are problems with one unit, the other units will still keep running.


How important is the slowdown in parameter regulation while running 12 bioreactors in parallel?

An important aspect to consider – which, however, does not play a role in the LAMBDA MINIFOR parallel system because each MINIFOR fermenter comes with its proper regulation unit that measures and controls all parameters locally. As a consequence the quality of the measurement and regulation is not affected by long transmission times and dead times in regulation.


How much space is required for the MINIFOR unit?

Footprint: approximately a sheet of paper
Dimensions: 22 cm x 38 cm x 40 cm (W x H x D)

Módulo de pesada para cultivo continuo Mostrar detalles
Unidad de medición de potencial REDOX Mostrar detalles
LAMBDA MINI-4-GAS automatic 4-gas station for cell culture MINI-4-GAS Módulo automático de mezcla de gases Mostrar detalles
El sistema más pequeño de control anti-espuma Mostrar detalles
FNet Programa de Control de la Fermentación FNet - Programa de fermentación Mostrar detalles
Programa de fermentación Industrial SIAM Mostrar detalles
Módulo del programa del controlador de gases Mostrar detalles
LAMBDA OXÍMETRO Medición de la concentración de O2 en el gas de salida Mostrar detalles
LAMBDA CARBOXÍMETRO Medición de la concentración de CO2 en el gas de salida Mostrar detalles
LAMBDA METÁMETRO Medición de la concentración de CH4 en el gas de salida Mostrar detalles
Additional PRECIFLOW pump line PRECIFLOW pump 0-600 ml/h, reagent bottle with pipes, fittings, filter, tubing Mostrar detalles
Additional MULTIFLOW pump line MULTIFLOW pump, reagent bottle with pipes, fittings, filter and tubing Mostrar detalles