Bioreaktor - Laborfermenter

Bioreaktor - Laborfermenter

Durch Innovationen zu einem Laborfermenter und Bioreaktor zum halben Preis. LAMBDA setzt neue Massstäbe in der Laborfermentation und für Zellkulturen:

LAMBDA MINIFOR Bioreaktor und Laborfermenter

LAMBDA MINIFOR ist ein Laborfermenter und Benchtop-Bioreaktor für Arbeitsvolumen von 35 ml bis 6 Liter. Alle wichtigen Parameter der Kultur werden gemessen und geregelt. Die Bedienung ist logisch und einfach aufgebaut. Das Kulturgefäss, die Elektroden und der Zubehör, der mit dem Reaktormedium in Berührung kommt, sind einfach autoklavierbar.

Minimale Stellfläche auch für Parallelreaktoren

Der Laborfermenter und Bioreaktor MINIFOR nimmt nur eine minimale Tischfläche in Anspruch (etwa ein A4 Blatt). 

Beliebig viele Bioreaktoreinheiten können als Parallelreaktor zusammengestellt werden und so mit minimalem Bedienungsaufwand mehrere Versuche parallel durchgeführt werden.


Das ist besonders vorteilhaft für die Optimierung der Wachstumsparameter (pH, pO2, Temperatur), Medienoptimierung (C- und N-Quelle, Spurenelemente, Aminosäuren usw.) von Biotransformationen und Bioreaktionen und für den Einsatz im regulären Screening.

Bedienung des Bioreaktors, Fernsteuerung und Datenspeicherung

Jede Bioreaktoreinheit wird durch einen eigenen Mikroprozessor kontrolliert und kann individuell über die Tastatur am Bioreaktor bedient werden.

Die Soll- und Ist-Werte aller Parameter sind gleichzeitig auf der Anzeige sichtbar (kein Umblättern oder Scrolling).

Sie können den Bioreaktor LAMBDA MINIFOR optional auch über Ihren PC bedienen.

Mit der Automation-Software SIAM und der Fermentationssoftware FNet werden ein einzelner Bioreaktor MINIFOR oder das Parallelreaktorsystem von einem PC gesteuert, sämtliche Daten gespeichert, bearbeitet und übersichtlich dargestellt.

Innovationen für ein ausgezeichnetes Preis-Leistungsverhältnis

Für das ausgezeichnete Preis-Leistungsverhältnis ist der Bioreaktor und Laborfermenter LAMBDA MINIFOR mit folgenden Innovationen bestückt:

Einfach austauschbare Kulturgefässe für den Bioreaktor & Laborfermenter

  • Die Kulturgefässe (0.3, 0.4, 1, 3 und 7L) sind mit Glasschraubverbindungen mit Multipunkt-Dichtungen aus Silikon versehen und können zusammen mit den Sonden ganz einfach im Autoklaven sterilisiert werden. Die Silikondichtungen lassen sich sehr einfach montieren. Der Fermentor MINIFOR ist dadurch in Rekordzeit einsatzbereit und garantiert eine anhaltende Sterilität und eine einfache Sterilarbeit nach der Inokulation.

 

  • Anstelle des üblichen Propellerrührers (mit der kontaminationsanfälligen mechanischen Kupplung) oder eines Magnetrührers wurde beim MINIFOR ein Vibromischer eingesetzt. Seine Bewegung verursacht ein intensives Durchmischen und die optimale Begasung des Mediums (kein Luftstau) bei zugleich niedrigen Scherkräften. Die biomimetischen elastischen FiSH-TAIL-Mischplatten garantieren eine maximale Mischeffizienz und völlig ohne Schnittkanten.

 

  • Zur Erwärmung und Temperaturkontrolle dient ein Infrarot-Strahler mit Goldschicht-Reflektor, der unter dem Glasgefäss installiert ist. Die Wärmestrahlung wird durch das Medium sanft und regelmässig absorbiert. Damit wird die lokale Überhitzung der Kultur an der Oberfläche von Heizstäben oder Heizmatten vermieden und hohe Kosten wie bei Doppelmantelgefässen mit Wasserkreislauf eingespart. Die freie Oberfläche des Gefässes erlaubt eine einfache Kühlung des Mediums durch die Raumluft.

 

  • Durch die moderne Mikroprozessortechnologie kann die gesamte Elektronik unter der Frontplatte des Laborfermenters/Bioreaktors untergebracht werden. MINIFOR ist dadurch im Konkurrenzvergleich einzigartig kompakt, ohne an Parameteroptionen einzubüssen.

 

  • Anstelle eines teuren Reaktordeckels aus rostfreiem Stahl wurde für MINIFOR ein hochwertiger Kunststoff verwendet (durch eine Silikonkappe von der Kultur getrennt). Die Reaktorkonstruktion sieht ein Minimum an Verbrauchsmaterial vor. Im Gegensatz zu herkömmlichen Reaktordeckeln sind bei MINIFOR keine zeitaufwendig zu ersetzende O-Ringe oder teures Ersatzmaterial eingebaut.
Spannungsversorgung: Universal: Netzspannung 100 - 245 V AC / 50 - 60 Hz, 560 W, CE konform (Netzstecker wählbar: EU, CH, US, UK, AU)
Abmessung: 22 x 40 x 38 cm (B x T x H)
Anzeige: LCD 4 x 40 Ziffern mit Hintergrundbeleuchtung
Fermentergefäss: Austauschbare Gefässtypen: 0.3L, 0.4L, 1L, 3L, 7L; Pyrex-Glasgefäss mit 6 bis 10 Gewindestutzen für Multi-Anschlüsse
Temperaturkontrolle: Hocheffizienter 150 W IR-Strahler (Infrarot-Strahler) Wärmequelle mit vergoldetem parabolischem Spiegel
Regelung: Ab 5 °C über der Raumtemperatur bis 70 °C
Auflösung: Ab 0 °C bis 99.9 °C in Schritten von 0.1 °C
Genauigkeit: +/- 0.2 °C (0 °C bis 60 °C)
Thermoelement: Pt100 (in der Glaselektrode der pH-Sonde eingebaut)
pH-Kontrolle: Sterilisierbare pH-Elektrode, pH 0-14 mit automatischer Temperaturkorrektur, Zwei-Punkt-Kalibrierung, halbautomatische Eichung und Variopin Steckverbinder
Auflösung: 0.01 pH Einheiten (elektr. Anzeige)
Genauigkeit: +/- 0.02 pH Einheiten (elektr. Anzeige)
pO2 Messung und Regelung: Sterilisierbare Sauerstoff-Elektrode (Clark Typ) mit schneller Ansprechzeit, automatischer Temperaturkorrektur, Zwei-Punkt-Kalibrierung, halbautomatische Eichung, Regler für gelösten Sauerstoff (DO) mit Steuerung durch die Belüftungsrate
Auflösung: 0 - 25 mg Sauerstoff/Liter, in 0.1 mg/L Schritten
Luftdurchflussmessung: 0 - 5 L/min in 0.01 L/min Schritten, präziser Massenflussregler, Linearität+/- 3%, Reproduzierbarkeit +/- 0.5%
Regulierung: Proportionalventil gesteuert durch Mikroprozessor
Begasung: 0.05 – 0.2 MPa (0.5 - 2 atm)
Rührung: 50 W Vibrationmischer 0 Hz - 20 Hz ( entsprechen 0 - 1200 rpm) in 0.1 Hz Schritten (6 rpm), mit 1 oder mehreren Mischplatten (Anzahl und Beschaffung wählbar); Sterilitätskapazität ähnlich jener einer Magnetkupplung
Wählbarer Parameter: Automatische Antischaumkontrolle, Gewichtskontrolle für den Chemostaten, pCO2, REDOX-Potential, Leitfähigkeit, optische Dichte oder anderer Parameter mit 0 - 10 V oder 0 - 20 mA Ausgang
Ernteeinrichtung-Probenahme: Ein grosser Viereranschluss für Probenahmen (Medium, Zellen) und Zugaben (Inokulation, Antischaum, Extrafeeds, Fütterungsmedium, Abernte, Korrekturflüssigkeiten für pH, …), Septum (Inokulation, Vitaminzugaben, …), zusätzliche Doppelanschlüsse sind erhältlich
Pumpenanschluss: Frei wählbare Anzahl LAMBDA Schlauchpumpen (PRECIFLOW, MULTIFLOW, HIFLOW, MAXIFLOW, MEGAFLOW) mit Geschwindigkeitsansteuerung zwischen 0 und 100 % als Stellglied für die Parameterkontrolle (z.B. Säure- und Basepumpen für die pHRegelung)
Gasflusskontrolle: Ein eingebauter MASSFLOW 0 – 5 L/min, einstellbar in 10 ml/min Schritten. Optional frei wählbare Anzahl MASSFLOW 5000 (für 0 – 5L/min) und MASSFLOW 500 (für 0 – 500 ml/min) für Einzelgase (N2, O2, Luft, CO2 ,…); MINI-4-GAS für Gasgemische basierend auf Flussraten und/oder Parameter-Sollwerten
Betriebstemperatur: 0 – 40 °C
Relative Betriebsfeuchtigkeit: 0 - 90 % rel. Luftfeuchtigkeit, nicht kondensierend
Gewicht: 7.5 kg
Fernsteuerung und Datenauswertung, PLS: Fermentationssoftware FNet (bis zu 6 MINIFOR Fermenter) oder Automationssoftware SIAM (höhere Kapazitäten), Laptop

2018: MINIFOR lab scale bioreactor used for production of bioethanol from lignocellulosic biodegradable municipal solid waste (BMSW) under optimized conditions

Hayder, Nadhim H., Hussain M. Flayeh, and Ali W. Ahmed. "Optimization of Bioethanol Production from Biodegradable Municipal Solid Waste using Response Surface Methodology (RSM)." Journal of Engineering and Sustainable Development Vol 22, no. 01 (2018).

Baghdad University, Biotechnology Department and  Environmental Engineering Department, Baghdad, Iraq.

Keywords:  Biodegradable municipal solid waste; Bioethanol; Fermentation; Bioreactor


2017: Efficient ethanol production from whey permeate (WP) and concentrated permeate (CWP) with engineered E. coli in pH-controlled bioreactor MINIFOR
Pasotti, Lorenzo, Susanna Zucca, Michela Casanova, Giuseppina Micoli, Maria Gabriella Cusella De Angelis, and Paolo Magni. "Fermentation of lactose to ethanol in cheese whey permeate and concentrated permeate by engineered Escherichia coli." BMC biotechnology 17, no. 1 (2017): 48.
University of Pavia, Laboratory of Bioinformatics, Mathematical Modelling and Synthetic Biology, Department of Electrical, Computer and Biomedical Engineering, Pavia, Italy; University of Pavia, Centre for Health Technologies, Pavia, Italy.
Keywords: Ethanol; Lactose; Fermentation; Escherichia coli; Whey permeate


2017: The effect of different temperatures on sugar starvation in cells isolated from fresh leafy vegetables was studied in MINIFOR bioreactor
Mbong, Victor Baiye Mfortaw, Jerry Ampofo-Asiama, Maarten LATM Hertog, Annemie H. Geeraerd, and Bart M. Nicolai. "The effect of temperature on the metabolic response of lamb’s lettuce (Valerianella locusta,(L), Laterr.) cells to sugar starvation." Postharvest Biology and Technology 125 (2017): 1-12.
KU Leuven, Division of Mechatronics, Biostatistics and Sensors (MeBioS), Department of Biosystems (BIOSYST), Leuven, Belgium; Flanders Centre of Postharvest Technology (VCBT), Leuven, Belgium.
Keywords: Isolated lamb’s lettuce cells; Sugar starvation; Temperature; Metabolome; 13C label


2017: LAMBDA MINIFOR bioreactor for the production of CB.Hep-1 mAb using mouse hybridoma cell culture in protein-free media
Valdés R, Aragón H, González M, Hernández D, Geada D, Goitizolo D et al. Mouse hybridoma cell culture in a protein-free medium using a bio-mimicking fish-tail disc stirred bioreactor. BioProcess J, 2017; 16(1): 51–64.
CIGB, Havana, Cuba.


2016: Robust cellulosic ethanol production from sugarcane bagasse with Saccharomyces cerevisiae ATCC 20602 in LAMBDA MINIFOR laboratory bioreactor under aerobic and anaerobic conditions with controlled redox potential measurement
Jabasingh, S. Anuradha, et al. "Catalytic conversion of sugarcane bagasse to cellulosic ethanol: TiO2 coupled nanocellulose as an effective hydrolysis enhancer." Carbohydrate polymers 136 (2016): 700-709.
Addis Ababa Institute of Technology, Ethiopia; Sathyabama University, India.
Keywords: Cellulosic ethanol; bagasse; Titanium dioxide; Nanocellulose; Cellulase Saccharomyces cerevisiae


2015: S. pyogenes Cas9 protein expressed using a 3L computer-controlled MINIFOR bioreactor in batch medium followed by exponential feeding
Ménoret, Séverine, et al. "Homology-directed repair in rodent zygotes using Cas9 and TALEN engineered proteins." Scientific reports 5 (2015): 14410.
INSERM UMR 1064-ITUN; CNRS UMS3556 Nantes; CNRS UMR7196; Sorbonne Universities; University Pierre & Marie Curie; France.


2015: Fermentation of engineered microorganism in laboratory scale bioreactor MINIFOR for efficient conversion of lactose-to-ethanol
Pasotti, Lorenzo, et al. "Methods for genetic optimization of biocatalysts for biofuel production from dairy waste through synthetic biology." Engineering in Medicine and Biology Society (EMBC), 2015 37th Annual International Conference of the IEEE. IEEE, 2015.
University of Pavia, Department of Electrical, Computer & Biomedical Engineering and Interdepartmental Research Centre for Tissue Engineering, Italy
Keywords: lactose-to-ethanol conversion; microorganism optimization; synthetic biology; whey protein; permeate; pollutant waste disposal; genetic optimization; green energy production; biofuel production; cheese production process; dairy waste; biocatalyst


2015: Six-species flow cell biofilm model was developed by culturing bacteria in LAMBDA MINIFOR Bioreactor to evaluate the biofilm development under flow and shear conditions
Salli, Krista M., and Arthur C. Ouwehand. "The use of in vitro model systems to study dental biofilms associated with caries: a short review." Journal of oral microbiology 7 (2015).
DuPont Nutrition and Health, Kantvik Active Nutrition, Finland.
Keywords: dental caries, batch culture, continuous culture, artificial mouth, flow cell, microcosm 


2015: Quantification of ribosomal proteins (RPs) from Yeast cells cultured in MINIFOR bioreactor and mouse embryonic stem cells (ESC) to study the core RPs stoichiometry
Slavov, Nikolai, et al. "Differential stoichiometry among core ribosomal proteins." Cell reports 13.5 (2015): 865-873.
Harvard University, USA; Broad Institute of MIT and Harvard, USA and Hubrecht Institute, Netherlands.
Keywords: Budding Yeast cells, Embryonic stem cells (ESC), Ribosomal Protein, RP, ribosomes, mRNA, mass-spectrometry, posttranslational modification, PTM


2014: Cultivation of microalgae (Chlorella vulgaris Beyerinck) in laboratory bioreactor MINIFOR
Heitur, Heiko. Mikrovetika Chlorella vulgaris Beyerincki kasvatamine CO2 sidumise eesmärgil. Diss. 2014.
Eesti Maaülikool (Estonian University of Life Sciences), Estonia.
Keywords: CO2, microalgae, growth rate, photobioreactor


2014: Growing yeast cultures (DBY12007) in the MINIFOR fermenter at steady state to study the aerobic glycolysis and energy flux
Slavov, Nikolai, et al. "Constant growth rate can be supported by decreasing energy flux and increasing aerobic glycolysis." Cell reports 7.3 (2014): 705-714.
Massachusetts Institute of Technology, USA; Harvard University, USA; Hubrecht Institute, Royal Netherlands Academy of Arts and Sciences and University Medical Center Utrecht, Netherlands and Princeton University, USA.
Keywords: Yeast, aerobic glycolysis, exponential growth, O2 consumption, CO2 production, amino acids, mRNAs, proteins, posttranslational modifications, stress sensitivity, respiratory quotient (RQ)


2014: Selective and non-selective batch fermentation of date extract using Saccharomyces cerevisiae (commercial strain used in bakeries (wild strain), glucose selective strains ATCC 36858 and ATCC 36859) studied in LAMBDA MINIFOR fermentor
Putra, Meilana Dharma, et al. "Selective fermentation of pitted dates by S. cerevisiae for the production of concentrated fructose syrups and ethanol." Journal of Physics: Conference Series. Vol. 495. No. 1. IOP Publishing, 2014.
King Saud University, Chemical Engineering Department, Saudi Arabia 
Keywords: Selective, non-selective, fermentation, yeast, S. cerevisiae, fructose, ethanol, date, HPLC, kinetic profile, batch


2014: The metabolic stress response of tomato cell culture (Lycopersicum esculentum) to low oxygen studied using LAMBDA MINIFOR Bioreactor
Ampofo‐Asiama, Jerry, et al. "The metabolic response of cultured tomato cells to low oxygen stress." Plant Biology 16.3 (2014): 594-606.
KU Leuven, Belgium; Flanders Centre of Postharvest Technology (VCBT), Leuven, Belgium;
Keywords: 3C label; cell culture; low O2 stress; Lycopersicum esculentum; metabolome


2014: LAMBDA MINIFOR bioreactor to grow the oral bacteria (Streptococcus oralis, Actinomyces naeslundii, Veillonella parvula, Fusobacterium nucleatum, Aggregatibacter actinomycetemcomitans and Porphyromonas gingivalis) under planktonic conditions
Blanc, V., et al. "Characterization and application of a flow system for in vitro multispecies oral biofilm formation." Journal of periodontal research 49.3 (2014): 323-332.
DENTAID S. L., Cerdanyola del Vallès, Spain; ETEP Research Group, University Complutense of Madrid, Spain;
Keywords: biofilm model; chlorhexidine; confocal laser scanning microscopy; oral bacteria


2013: Recombinant expression of the Met-CCL5, protease resistant CXCL12 (S4V) and F1-CX3CL1 in E. coli using MINIFOR fermenter/bioreactor to study their role in Cardiovascular disease (CVD)
Projahn, Delia, and Christian Weber. Generation, function and therapeutic application of chemotactic cytokines in cardiovascular diseases. Diss. Hochschulbibliothek der Rheinisch-Westfälischen Technischen Hochschule Aachen, 2013.
RWTH Aachen, Germany.


2013: Expression of Caf1 protein using Escherichia coli strain in MINIFOR fermentor to study mammalian cell adhesion, shape and number of focal adhesion
Machado Roque, Ana Isabel. "Protein scaffolds for cell culture." (2013).
Newcastle University, UK.


2013: LAMBDA MINIFOR Bioreactor used for recombinant protein (Chemokines) expression in E. coli
Kramp, Birgit, and Robert Ryan Koenen. Establishing the interaction between the CC chemokine ligand 5 and the receptors CCR1 and CCR. Diss. Hochschulbibliothek der Rheinisch-Westfälischen Technischen Hochschule Aachen, 2013.
RWTH Aachen, Germany.


2013: Systems for High-Density Hybridoma Growth and High-yield mAb production in cell culture: Bench-top stirred tank bioreactors, 1-5 L (MINIFOR - LAMBDA Laboratory Instruments)
Kase, Matthew R., ed. Making and using antibodies: a practical handbook. CRC press, 2013.


2013: Controlled growth of Staphylococcus aureus under various concentrations of BAC (benzalkonium chloride) in MINIFOR fermentor
Cervinkova, Dana, et al. "The role of the qacA gene in mediating resistance to quaternary ammonium compounds." Microbial Drug Resistance 19.3 (2013): 160-167.
Veterinary Research Institute, Brno, Czech Republic.
Keywords: Staphylococcus aureus, benzalkonium chloride (BAC), exponential phase, expression, real-time PCR, culture, concentration


2012: Effective production of Biobutanol from agricultural waste (giant hogweed, hay) using MINIFOR bench-top laboratory fermenter
Mezule, L., et al. "Biobutanol production from agricultural waste: A simple approach for pre-treatment and hydrolysis." Latvian Journal of Chemistry 51.4 (2012): 407-414.
Riga Technical University, Latvia 
Keywords: biofuel, biobutanol, agricultural waste, hydrolysis


2012: MINIFOR Bioreactor for stem cells
Shayan, Niloufar, et al. "A non-rotational, computer-controlled suspension bioreactor for expansion of umbilical cord blood mononuclear cells." Biotechnology letters 34.11 (2012): 2125-2131.
Department of Regenerative Medicine, Cell Research Center, Royan Institute for Stem Cell Biology and Technology, Royan Cord Blood Bank, Tehran, Iran; Department of Stem Cells and Developmental Biology, Cell Research Center, Royan Institute for Stem Cell Biology and Technology, ACECR, Tehran, Iran 
Keywords: Static culture; Suspension bioreactor; Umbilical cord blood; Vertical mixing


2011: Bioethanol production using Yeast (S. cerevisiae) in LAMBDA MINIFOR fermenter
Burešová, Iva, and Luděk Hřivna. "Effect of wheat gluten proteins on bioethanol yield from grain." Applied Energy 88.4 (2011): 1205-1210.
Agrotest Fyto, Ltd., Kroměříž, Czech Republic; Mendel University in Brno, Czech Republic 
Keywords: Bioethanol; Triticale; Wheat; Gluten; Protein


2010: Anaerobic fermentation of the glucose component in dates extract by yeast Saccharomyces cerevisiae
Gaily, Mohamed H., et al. "A Direct Process for the Production of High Fructose Syrups from Dates Extracts." International Journal of Food Engineering 6.3 (2010): 12.
King Saud University, Saudi Arabia; University of Khartoum, Sudan 
Keywords: dates, fructose, glucose, ethanol, fermentation, S. Cerevisiae, yeast, mesophilic, batch


2007: Anaerobic expression using the LAMBDA MINIFOR
Park, Myong-Ok, Taeko Mizutani, and Patrik R. Jones. "Glyceraldehyde-3-phosphate ferredoxin oxidoreductase from Methanococcus maripaludis." Journal of bacteriology 189.20 (2007): 7281-7289.
Research and Development Division, Fujirebio Incorporated, Japan.


2005: pH and temperature continuously recorded with the LAMBDA MINIFOR and SIAM software
Chaignon, Philippe, et al. "Photochemical reactivity of trifluoromethyl aromatic amines: the example of 3, 5-diamino-trifluoromethyl-benzene (3, 5-DABTF)." Photochemistry and photobiology 81.6 (2005): 1539-1543.
Institut de Chimie des Substances Naturelles, C.N.R.S, France.


 

Do you sell/ship to the USA?

Yes, we do supply our instruments directly with door-to-door delivery option by the parcel services to the USA.


What is the availability of the product?

We have the instruments in stock. We would just have to configure the instruments according to your requirements and perform quality control before shipping. 


 Is there a warranty?

We offer a 2 year warranty for MINIFOR fermentor / bioreactor and 5 year warranty for the PRECIFLOW & MULTIFLOW peristaltic pumps.


Does this fermentor work on both mammalian cells and yeast cells?

Yes, MINIFOR fermentor and bioreactor can be used for mammalian and yeast cell cultures (More information at www.fermentor.net/applications).


Is there flexibility in the top plate to add or remove probes?

Yes, MINIFOR has free ports in the headspace for the additional probes (sensors). Multiple ports and other effective solutions in the fermentation glass vess make the MINIFOR configuration equivalent to 16 to 22 classical ports (it is possible to increase the number of ports – custom made solution)


Is the equipment suitable for use in pure / mixed culture?

Yes, MINIFOR is suitable for pure as well as mixed culture. The stirrer is strong and can easily be adapted according to the types of cultures and working volumes.


Why is MINIFOR perfectly suitable for parallel processes?

Each unit stays independent as it is equipped with a control panel and display and at a single glance shows the parameter values. All parameters are regulated locally inside each fermenter-bioreactor unit.

This allows fast and precise parameter regulation and never having to worry about leaving a vessel unattended. Further advantage is that in case there are problems with one unit, the other units will still keep running.


How important is the slowdown in parameter regulation while running 12 bioreactors in parallel?

An important aspect to consider – which, however, does not play a role in the LAMBDA MINIFOR parallel system because each MINIFOR fermenter comes with its proper regulation unit that measures and controls all parameters locally. As a consequence the quality of the measurement and regulation is not affected by long transmission times and dead times in regulation.


How much space is required for the MINIFOR unit?

Footprint: approximately a sheet of paper
Dimensions: 22 cm x 38 cm x 40 cm (W x H x D)

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